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Aug 31, 2023

Struttura, catalisi, trasporto della chitina e inibizione selettiva della chitina sintasi

Nature Communications volume 14, numero articolo: 4776 (2023) Citare questo articolo

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La chitina è uno dei biopolimeri naturali più abbondanti e funge da componente strutturale critico delle matrici extracellulari, comprese le pareti cellulari dei funghi e gli esoscheletri degli insetti. Essendo un polimero lineare della N-acetilglucosamina legata a β-(1,4), la chitina è sintetizzata dalla chitina sintasi, che è riconosciuta come bersaglio per farmaci antifungini e anti-insetti. In questo studio, determiniamo sette diverse strutture al microscopio crioelettronico di una chitina sintasi di Saccharomyces cerevisiae in assenza e presenza di glicosil donatore, accettore, prodotto o inibitori del nucleoside peptidlico. Combinate con le analisi funzionali, queste strutture mostrano come i substrati donatore e accettore si legano nel sito attivo, come l'idrolisi del substrato guida l'autoadescamento, come si apre un canale transmembrana che conduce la chitina e come gli inibitori del nucleoside peptidlico inibiscono la chitina sintasi. Il nostro lavoro fornisce una base strutturale per comprendere la funzione e l'inibizione della chitina sintasi.

La chitina è il secondo polisaccaride naturale più abbondante sulla terra dopo la cellulosa e ogni anno gli organismi viventi producono circa 100 miliardi di tonnellate di chitina1. La chitina è un componente primario delle pareti cellulari dei funghi, degli esoscheletri di crostacei e insetti, e svolge un ruolo essenziale nella riproduzione, crescita o sviluppo di questi organismi2. La chitina è un polimero a catena lunga di N-acetilglucosamina (GlcNAc) legata a β-(1,4) ed è sintetizzata dalla chitina sintasi nella membrana plasmatica3,4. La chitina sintasi catalizza la formazione di legami glicosidici β (1 → 4) nella chitina utilizzando GlcNAc attivato da UDP (UDP-GlcNAc) come donatore di zucchero e nel frattempo trasporta il prodotto polisaccaridico attraverso la membrana (Fig. 1a).

uno schema di sintesi e trasporto della chitina da parte di Chs1. b Test in vitro della glicosiltransferasi UDP-Glo ​​con Chs1 purificato in tampone con (WT) o senza (noGlcNAc) GlcNAc. Il test in condizioni WT è stato eseguito anche con EDTA, trypsin, NikkoZ o PolyB. La reazione senza Chs1 è stata utilizzata come controllo. I punti dati rappresentano la media ± DS in triplicato. I dati di origine vengono forniti come file di dati di origine. c Test di sintesi della chitina in vitro con Chs1 purificato in tampone con (WT) o senza (noGlcNAc) GlcNAc. Il test in condizioni WT è stato eseguito anche con EDTA e trypsin. La reazione senza Chs1 è stata utilizzata come controllo. I punti dati rappresentano la media ± DS in triplicato. I dati di origine vengono forniti come file di dati di origine. d Mappa Cryo-EM e modello atomico del dimero apo Chs1. e Rappresentazione cartoon del monomero Chs1. Il polipeptide è mostrato in arcobaleno dal terminale N al C-terminale. Il presunto sito attivo è evidenziato da un cerchio arancione. Il presunto canale di trasporto della chitina è delineato da una freccia viola. f Topologia dei cartoni animati del monomero Chs1. g La mappa del dominio Chs1. I principali domini e motivi sono etichettati. La regione N-terminale invisibile è in bianco.

In Saccharomyces cerevisiae, la chitina sintasi è codificata principalmente da CHS1, CHS2 o CHS3. L'eliminazione simultanea di tutti e tre i geni è letale nel lievito5. ScChs1 e ScChs2 appartengono alla stessa famiglia della chitina sintasi, che contiene un numero diverso di eliche transmembrana da ScChs36. ScChs1 e ScChs2 sono responsabili della sintesi del setto primario e sono legati alla separazione cellulare nella citocinesi, mentre ScChs3 è responsabile della formazione di chitina nell'anello gemma e di chitina dispersa nella parete cellulare5,7,8,9,10,11. Studi precedenti hanno indicato che Chs1 è principalmente in forma zimogena e può essere attivato mediante proteolisi3,12,13.

La chitina sintasi appartiene alla famiglia delle glicosiltransferasi 2 contenenti la piega GT-A, che comprende anche l'acido ialuronico e la cellulosa sintasi14,15. Negli ultimi anni sono state riportate le strutture dell'acido ialuronico e della cellulosa sintasi, fornendo informazioni strutturali sui loro meccanismi di funzionamento16,17,18,19,20,21. Tuttavia, la struttura della chitina sintasi non è stata determinata, ostacolando una comprensione meccanicistica dei meccanismi catalitici e di trasporto della chitina sintasi.

2000 cells were counted and calculated using w303 and chs1Δ as negative and positive controls. The phenotype of the cell string is an indicator of how much Chs1’s function is disrupted in vivo. d Structural comparison between UDP-GlcNAc donor-bound Chs1 (purple) and primed UDP+GlcNAc-bound Chs1 (cyan) by aligning their TMs. The orange arrow marks the shift of the GT domain and nucleotide toward the membrane from the donor-bound state to the primed state. The active site is highlighted by a blue rectangle. The sugar donor is highlighted by a yellow rectangle. e Close-up view of the active site of primed Chs1 (cyan) in complex with UDP, GlcNAc, and two Mg2+ ions (lime). This is enlargement of the blue rectangle in (d) viewed from left. Substrates and key residues are shown in stick representation. f Enlargement of the yellow rectangle in (d) viewed from back. The UDP (cyan) and Mg2+ (lime) of primed Chs1, and UDP-GlcNAc (purple) and Mg2+ (purple) of the donor-bound Chs1 are shown. α-, β-phosphates are labeled, highlighting a 180° rotation of the β-phosphate from UDP-GlcNAc to UDP./p>4 Å. This is probably partially because the conserved metal coordinate DxD motif in other metal-dependent GT-A fold glycosyltransferases33 is replaced by a DAG motif (residues 602–604) in Chs1 (Fig. 3a, Supplementary Fig. 14). Such architecture of Mg2+ enables the movement of β-phosphate./p>

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